ChIP 与 R-ChIP:染色质与 RNA-DNA 互作研究的核心技术
在生命科学研究中,基因表达调控的分子机制一直是探索的热点。
染色质免疫沉淀(Chromatin Immunoprecipitation, ChIP)和 R-ChIP(RNA-DNA Hybrid Immunoprecipitation)作为两种关键技术,分别从 DNA - 蛋白质和 RNA-DNA 互作层面揭示了表观遗传调控的奥秘。
本文将系统介绍这两项技术原理、应用场景、实验流程及注意事项,并探讨纳米抗体技术对其性能的革新。
技术原理:从 DNA 到 RNA-DNA 互作的精准捕获
R-ChIP 主要用于研究 RNA-DNA 杂交体(R-loop)的分布与功能,其原理与 ChIP 类似,但针对 RNA-DNA 互作进行了优化:
应用场景:解析基因调控的多维度工具
2. R-ChIP 的独特价值
· R-loop 功能研究:R-loop 在转录调控、DNA 损伤修复及基因组稳定性中起关键作用。陈亮课题组利用 R-ChIP 发现 RNA 聚合酶停滞是 R-loop 形成的重要原因,并揭示了 GC 含量和 DNA 二级结构对 R-loop 动态变化的影响。
· 疾病机制探索:R-loop 异常与癌症、神经退行性疾病相关。例如,在骨髓增生异常综合症(MDS)中,R-ChIP 发现剪接因子突变导致造血干细胞 R-loop 水平紊乱,影响基因组稳定性。
· RNA 加工与稳定性:结合 RNA-seq,研究 R-loop 对 RNA 剪接、转运及降解的影响。例如,R-ChIP 揭示了 R-loop 在 mRNA 3' 端加工中的作用。
实验流程:从样本处理到数据分析的标准化操作
ChIP 实验流程
1. 交联
使用甲醛等交联剂处理细胞或组织,让蛋白质与 DNA 之间形成共价键,稳定它们之间的相互作用,将蛋白质 - DNA 复合物固定下来,即便短暂的相互作用也能被捕获。例如,对于哺乳动物细胞,常使用 1% 甲醛在室温下交联 10 - 15 分钟,之后加入甘氨酸终止交联反应。
2. 细胞裂解
通过去污剂溶液溶解细胞膜,使交联的蛋白 - DNA 复合物从细胞或组织中释放到溶液里 。此步骤可去除胞浆蛋白,降低背景信号 ,提高实验灵敏度。通常不建议机械裂解细胞,可使用如 Thermo Scientific Pierce 染色质制备模块等试剂,分离核组分与其他细胞成分 。
3. 染色质片段化
将提取的染色质剪切成较小的片段 ,理想范围在 200 - 1000bp 。常用方法有机械超声波处理或微球菌核酸酶(MNase)消化 。超声波能产生随机片段,但需专用设备,且要注意控制温度等;微球菌核酸酶消化可重复性高,更适合处理多个样本 ,不过酶活性变化等因素可能导致结果有变异 。
4. 免疫沉淀
抗体选择:挑选合适的 ChIP 验证抗体 ,这是实验成功的关键。对于哺乳动物样本,有多种 ChIP 级抗体可选;若靶蛋白无合格抗体,可表达 HA、myc 或 GST 等融合蛋白 ,再用针对亲和标记的抗体进行免疫沉淀 。
孵育结合:将抗体与 Protein A/G 微珠等结合 ,随后与细胞裂解液孵育,形成 “微珠 - 抗体 - DNA 结合蛋白 - DNA” 复合物 ,从而选择性富集目标蛋白质 - DNA 复合物 ,去除其他无关细胞材料 。
洗涤杂质:用低盐、高盐、LiCl 等洗涤缓冲液依次洗涤微珠 ,去除非特异性结合的杂质 。
5. 解交联与 DNA 回收
解交联:通过广泛热孵育(如 62 - 65°C 孵育一定时间 )或蛋白酶 K 消化蛋白质组分 ,断开蛋白质与 DNA 之间的交联 。
DNA 回收:采用酚氯仿结合标准 DNA 纯化方法 ,或使用专门的纯化柱,从蛋白质片段中分离并回收 DNA 。
6. DNA 分析
运用 PCR、qPCR 或测序(如 ChIP - seq )等技术 ,对回收的 DNA 进行分析 ,鉴定蛋白质结合的特定 DNA 区域 ,定量分析蛋白质 - DNA 相互作用 。
关键注意事项:提升实验可靠性的细节把控
ChIP 注意事项
· 抗体选择:优先使用 ChIP 级抗体,通过 ChIP-western 验证其特异性。避免使用仅适用于 WB 或 IHC 的抗体,因其可能无法识别交联后的表位。
· 交联优化:过度交联会降低抗体结合效率,建议通过甲醛浓度梯度实验确定最佳条件。例如,某些细胞系可能需要缩短交联时间至 5 分钟。
· 片段化控制:超声功率和时间需根据细胞类型优化,避免片段过长(>1.5 kbp)或过短(<500 bp)。酶法消化(如 MNase)可产生更均一的片段,适用于低输入样本。
R-ChIP 注意事项
· RNaseH1 活性验证:确保 RHΔ 无催化活性,避免降解 RNA-DNA 杂合体。可通过体外酶切实验验证,如使用放射性标记的 RNA-DNA 底物检测切割活性。
· 背景控制:使用阴性对照(如空载细胞)排除非特异性结合,同时设置 IgG 对照组。此外,可通过 RNAse A 处理样本,验证信号是否依赖 RNA-DNA 杂合体。
· RNA 保护:全程使用 RNase 抑制剂(如 RNasin),避免 RNA 降解影响实验结果。在裂解液和洗涤缓冲液中均需添加抑制剂。
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技术革新:纳米抗体赋能CHIP/R-CHIP的精准时代
传统 ChIP/R-ChIP 依赖多克隆或单克隆抗体,存在批次差异、背景高等问题。纳米抗体技术的引入彻底改变了这一局面:
技术应用实例:纳米抗体偶联产品在顶尖科研中的验证
值得关注的是,我们的产品Anti-GFP Magarose beads(KTSM1334)已在国际权威期刊《Nucleic Acids Research》的研究中得到成功应用。在题为《METTL3-mediated m6A modification stabilizes TERRA and maintains telomere stability》的论文中,研究团队通过 ChIP 实验揭示了 METTL3 蛋白通过 m6A 修饰调控端粒相关 RNA(TERRA)稳定性的机制。
论文链接:https://doi.org/10.1093/nar/gkac1027
ChIP 和 R-ChIP 技术为研究染色质水平的基因表达调控提供了强有力的工具。随着纳米抗体技术的引入,尤其是高质量纳米抗体琼脂糖珠偶联物的应用,使得 ChIP/R-ChIP 实验在特异性、灵敏度和可重复性方面获得了显著提升。
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